フランツセル（フランツ型拡散セル）　Franz Cell　－　経皮吸収試験機　膜透過実験装置:　特長

垂直型ガラス製の拡散セルです。一般にフランツセルと呼ばれています。オリフィス（開口部）の直径は標準で5mm, 9mm, 11.28mm, 15mm, 20mm、25mmから選択できます。またその他のサイズも特注で作成が可能です。

フランツセルには図の静置型に加え、皮膚のViabilityを維持できるフロー型（Flow　through diffusion cell)があります。

*オリフィスとはセル上部のレセプターチャンバー部分の面積を指します。5ml ～20mｌのものを規格品としてご用意しています。これらは主にジャケット付セルの最低容量となります。規格品以外の別注も承りますのでご相談ください。

また図のジャケットなし、ジャケット付きという分類にもあり、測定目的・内容により適切なものをお選びいただくことが重要です。

このうちオートメーションシステムにはバッファーを持続的に交換可能なジャケット付きのフロー型のみが対応します。

ジャケット付きフランツセル

右は一般的なジャケット付セルを表した図です。ジョイント部分はこれを含め数種ありますが、規格品として図の平面グランドジョイントが多く用いられます。容量自体に影響は与えません。全てのセルは図のように二つのガラス部分から構成され、クランプ、スターバー（攪拌に使用する磁石）とセットとして販売されます。

ジャケットなしフランツセル

左はジャケットなしのセルをスポンジ等に立てたものです。（ジャケットの役割等に関してはFAQをご覧ください。）ジャケットの有無に加え、最低容量等に若干の違いが出てきます。使用には温度コントロールされたプール、スタンド（専用スタンドは別売）、プールに対応するスターラーが必要です。

フランツセルには静置型に加え、この皮膚のViabilityを保てるフロー型があります。生理状態を維持するため、必要な栄養溶液を持続的に交換するための機能を備えています。具体的にはレセプター溶液循環のために新たなポートが加わります。なお後述の「フランツセル自動経皮吸収試験システム」はこのフロー型を使用した際のみに構築できます。

英語の "flow thru"、 "flow cell"、 もしくは "flow type" はともにレセプターコンパートメント内を流れることを表します。（ジャケットについて特に特別な変更はありません。）

オリフェスの直径が同じフロー型のレセプター容量は静置型にそれに比べ大きくなっています。これはジャケットの上部とジョイントの距離が長く、循環に必要なアームに適応させるよう設計されているためです。フロー型にはアームの形状等から下図の４つのタイプがあります。

フローポートのついたフランツセル（Type4)

試験を開始する前にレセプター内のバッファー、メンブレン（合成樹脂もしくは何らかの生体膜）、バッファーの温度、サンプリング容量、サンプリングの間隔を試験内容に合わせて決めておきます。

①恒温層の温度（循環するお湯の温度）を確認し、蒸留水を捨てた後、各セルにスターバーを入れます。

②メンブレン貼り付け時のバブルの発生を抑えるためレセプターの表面張力を利用してレセプターの上面一杯の水位から多少バッファーが盛り上がる程度（オーバーフロー気味）に満たします。

③メンブレンをレセプターのトップにゆっくり載せます。この際先ほどの盛り上がったバッファーの上から被せ余分なバッファーを隙間から漏れ出させるように上から圧します。もし空気がメンブレンとレセプターの間に溜まってしまったら、メンブレンを外し、再度バッファーを足してやり直します。

④メンブレンのバッファーへの接地面が完全で隙間がないか再度確認します。
ドナーキャップを取り付けクランプで留めます。各メンブレンのバリヤー機能の違いや、目に見えない漏れ等を把握するために水分蒸散計によるバリアーを測定し均等であることを確認します。

⑤定量（一般的には0.3gm /ml）のドナーコンパウンド溶液（ジェル、ローション、クリーム等）をメンブレンに塗布（もしくはドナーに添付）します。

より詳しい内容はご購入時に添付されますユーザーマニュアルをご覧ください。

PermeGear Franz Cell　Automated System

■フラクションコレクター（左前の図）によりユーザーは12つのセルから各々サンプルまでを採取することが可能。(V6スターラーをセル２つに増設した場合。）


■図は反時計回り１）フラクションコレクター、２）V6スターラー、３）ペリスタルティック・ポンプ、４）リザーバー（バッファー瓶）です。

■使用するバイアルは任意で選択可能。（標準で直径 28mm、20ml用バイアルに合わせたラックが付属。）


■使用するセルは使いやすく標準的なフランツセル（開口部9～15mm程度）を使用します。レセプター容量は5～12ｍＬ程度。

■現在すでにご使用の物を流用して、ご予算に合わせたシステムの構築が可能です。

PermeGear社製の自動経皮吸収試験システムについては全て以下のような「持続性フロー方式」を採用しています。「全自動化システム」ではない反面、より研究目的に経皮吸収実験を行う場合に高い利便性を有しています。

ここでいう「全自動化システム」ではレセプター溶液を自動でサンプリング後、ＨＰＬＣへ。その後レセプター溶液分を全量自動で交換します。

①ペリスタルティツクポンプでリザーバーよりマニフォールドを通じてレセプター溶液をセルへ。

②セルのジャケットは恒温層からのお湯で35-37℃程度に加温・維持される。スターラーのマグネットで透過中は攪拌も行う。

③セルにレセプター溶液を満たし、泡抜きが行われた後、使用される試料をドナーチャンバーに適用。

④設定された間隔でレセプター溶液がフラクションコレクターのバイアルに採取。

⑤サンプリングが終了した後、バイアルをマニュアルで分析のために取り外す。（ＨＰＬＣへ）
写真はスターラーV9、フランツセル９個との接続例。

V-Series Stirrers for Franz Cells

• 
• 純正フランツセル専用スターラーＶシリーズにはV3、V6、V9があり、それぞれ３、６、９つのセルを搭載できます。注）25ｍｍ以上のフラットフランジタイプのセルはVシリーズでは使用できません。
• スターラーの選択に際してはセルの数に加え、各セルの中心までの距離を考慮に入れます。Ｖ３ではセル３つ、Ｖ９ではセル９つを搭載し１つのセルの中心から隣接するセルの中心までの距離は127mmになります。(これとは別に水平セル・インラインセルにも使用可能なＨシリーズがあります。）
• Ｖ９－Ｃではセルの数は同じですが、この距離は66ｍｍと縮小します。２５ｍｍのセルでフラット・フランジ・クランプの幅は65ｍｍあります。このような場合、固定が難しくなります。また30ｍｍのセルでは同じクランプでも71ｍｍ幅になり、セル・ホルダーへの取り付けはできません。

在庫があり納期の早い標準品
納期は在庫状況等によりご注文から数日から1ヶ月程度となりますのでご了承ください。

なおジャケット付き静置型について特に多くの実績のあるものを、以下に★印を付け推奨させていただいております。これらについては多くの学術文献に使用され、ご注文後、数日内の出荷も可能なスタンダード品です。※個数等に影響されますので事前にお問合せください。

セット一式
9ｍｍタイプは透過面積が0.64平方センチとなり多くの論文で引用されています。11.28ｍｍタイプは透過面積がほぼ1平方センチとなり計算しやすいことで好評を得ています。

レセプター容量はそれぞれ5ｍｌ、8ｍｌとなります。

ドナー部分、レセプター部分に加え、スターバー（磁石）、ピンチ・クランプが標準で付属します。

＊専用スタンドは別売りです。

クランプはO-リング、平面グラウンド・ジョイントに用います。（詳細については後述のFAQをご覧ください。）　ピンチ・クランプは他社製品に比べ非常に扱いやすく、このオリジナルのステンレス製のものが各セルに付属します。またネイルアダプター使用する場合やフランジジョイントには蹄鉄クランプを使用します。

製品番号については最初の５つまでの２桁コードに関しては静置型と共通ですが、６番目のコードが必ずFTとなることで区別できます。その他静置型にないポートの種類に関するコードが加わります。
小見出しを入力します。

経皮吸収試験

Absorption of Contaminated Soil into Skin and Silicon Membranes - NIOSH - Deglin, Bunge

Amphiphilic Star-Like Macromolecules as Novel Carriers for Topical De-livery of Nonsteroidal Anti-Inflammatory Drugs – Michniak and Uhrich

Assembled Microneedle Arrays Enhance the Transport of Compounds Varying over a Large Range of Molecular Weight Across Human Dermatomed Skin - Verbaan, Bal, van den Berg, Groenink, Verpoorten, Luttge, and Bouwstra

Biodegradable Chitosan for Topical Drug Delivery of Retinoic Acid - Cattaneo, Demierre

A Novel Hydroxyapatite Bone Tissue Engineering Scaffold Incorporating a Tri-Model Pore Distribution - Buckley, O’Kelly

Transdermal and Buccal Delivery of Methylxanthines Through Human Tissue In Vitro- Michniak and Meidan

Carrier Proteins to Determine Local Pharmacokinetics and Artierial Distribution of Paclitaxel - Lovich, Creel, Hong, Hwang, Edelman

Interactions of Inertial Cavitation Bubbles with Stratum Corneum Lipid Bilayers during Low-Frequency Sonophoresis - Tezel, Mitragotri

Impact of Vehicle on Clobetasol Propionate Skin Permeation and Drug Distribution In Vitro - Huang, Tanojo, Lenn, Cuesico, Deng

Ultrasound Enhanced Transcorneal Drug Delivery - Zderic, Clark, Martin, Vaezy

A Novel Foam Vehicle for Delivery of Topical Corticosteroids - Huang, Tanojo, Lenn, Deng, Krochmal,

TNO Chemistry - Dermal Absorption and Metabolism (abstract)

Dermal Transfer and Penetration Algorithms - Intra, Italy 2005

Design, Testing, and Validation of an LC/MS Compatible Cell for Measuring Transdermal Diffusion- Utley

Transdermal Delivery of Diclofenac Sodium Through Rat Skin From Various Formulations - Özgüne , Karasul, Kantarcı, Sözer, Güneri, and Ertan

Influence of Drug Lipophilicity on Terpenes as Transdermal Penetration Enhancers - Godwin, Michniak

Near Infrared Spectrometry for the Qualification of Human Dermal Absorption of Econazole Nitrate and Estradiol - Medendorp, Paudel, Lodder, and Stnchcomb

Effect of Gramacidin on Percutaneous Permeation of a Model Drug - Lee, Hoo-Kyun Choi

Effects of Fatty Acids and Iontophoresis on the Delivery of Midodrine Hydrochloride and the Structure of Human Skin- Wang, Fan, Song, and Michniak

Occupational and Environmental Exposures of Skin to Chemicals - 2005 NIOSH - Skin Penetration of Organic Compounds from Aqueous and Lipophilic Vehicles - Romonchuk, Bunge
Validation of a Flow-Thru Diffusion Cell for Use in Transdermal Research – Addicks, Flyne and Weiner

Effect of Centrimide and Ascorbic Acid in In Vitro Human Skin Permeation of Haloperidol - Vaddi, Wang, Ho, Chan and Chan

Haut and Hautmodelle (Skin and Skin Models) - Muller, Muller, Lehr, Bakowsy, and Schafer

Transdermal Delivery of Heparin and Low-Molecular Weight Heparin Using Low-Frequency Ultrasound - Mitragotri, Kost

The Effect of Terpene Enhancer Lipophilicity on the Percutaneous Permeation of Hydrocortisone Formulated in HPMC gel systems -
El-Kattan, Asbill and Michniak

Improvement of the Experimental Setup to Assess Cutaneous Bioavailability on Human Skin Models: Dynamic Protocol (Abstract) - Dreher, Patouillet, Fouchard, Zanini, Messager, Rouget, Cottin, Leclaire, Beneche-Kieffer

In Vitro Delivery of Doxycycline Hydrochloride Based on a Porous Membrane-based Aqueous–organic Partitioning System Fana, Sirkar, Wang and Michniak

In Vitro Human Skin Penetration of the Fragrance Material Geranyl Nitrile - Bhatia, Lalko, Brain, Green

In Vitro Permeation of Tetramethlpyrazine across Porcine Buccal Mucosa - Chen, Hui-Nan, Xiao-Ling

In Vitro – In Vivo Percutaneous Absorption Comparability - Lehman, Franz and Raney Pre-Clinical Dermatology Research Laboratory, PRACS-Cetero Research, Fargo, North Dakota, USA Background. When chemicals come into contact with

In Vivo Percutaneous Absorption of Fragrance Ingredients in Rhesus Monkeys and Humans - Bronaigh, Wester, Bucks, Maibach, Sarason

Tyrosine-derived Nanospheres for Enhanced Topical Skin Penetration- Sheihet, Chandra, Batheja. Devore, Kohn and Michniak

Modulated Insulin Delivery from Glucose-Sensitive Hydrogel Dosage Forms - Kim, Park

Ocular Drug Delivery Using 20-kHz Ultrasound - Zderic, Vaezy, Martin, Clark

On-line Visualization of Dye Diffusion in Fresh Unfixed Human Skin - Grams, Whitehead, Cornwell and Bouwstra

Opinion on Homosalate - Scientific Committee on Consumer Products SCCP

Oxide Terpenes as Human Skin Penetration Enhancers of Haloperidol from Ethanol and Propylene Glycol and Their Modes of Action on Stratum Corneum - Vaddi, Ho, Chan, Chan

Percutaneous Penetration Enhancement Activity of Aromatic S,S-dimethyliminsulfuranes - Kim, El-Khalili, Henary, Strekowski, Michniak

Permeation and Reservoir Formation of 4-(methylnitrosamino)-1- (3-pyridyl) - 1- butanone (NNK) and Benzo[a]pyrene (B[a]P) across Porcine Esophageal Tissue in the Presence of Ethanol and Menthol - Azzi, Zhang, Purdon, Chapman, Nitcheva, Hebert, and Smith

Transdermal Delivery of Diclofenac Sodium Through Rat Skin From Various Formulations - Ozguney, Karasulu, Kantarci, Sozer, Guneri and Ertan

TEWL

Barrier Integrity Analysis using a Condenser-Chamber TEWL Instrument - Imhof, Xiao, Berg and Ciortea

イオントフォレーシス

Iontophoretic Transdermal Delivery of Buspirone Hydrochloride in Hairless Mouse Skin - Al-Khalili, Meidan and Michiniak

Iontophoretic Transdermal Delivery of Buspirone Hydrochloride in Hairless Mouse Skin - Al-Khalili, Meidan, Michniak

Transdermal Iontophoresis: Combination Strategies to Improve Transdermal Iontophoretic Drug Delivery - Wang, Thakur, Fan and Michniak